Dica do autor: Em pacientes adultos com quadro respiratório atípico associado à eosinofilia periférica, uma das principais hipóteses deve incluir o síndrome de Loeffler, que está frequentemente relacionado a parasitas com ciclo pulmonar, como Ascaris lumbricoides, Ancylostoma spp. e Strongyloides stercoralis. A escolha das técnicas parasitológicas adequadas é decisiva, principalmente quando a eliminação fecal do parasita se dá em formas não usuais, como larvas no lugar de ovos, o que pode comprometer a sensibilidade de métodos clássicos como o Kato-Katz.

O método de Baermann-Moraes é a técnica de referência para a detecção de larvas vivas de nematoides, principalmente Strongyloides stercoralis. Esse parasita, ao contrário da maioria dos helmintos intestinais, não elimina ovos nas fezes, mas sim larvas rabditoides ou filarioides, que migram ativamente por gravidade no meio líquido aquecido até o fundo do tubo. A visualização de larvas móveis de esôfago rabditoide é um achado típico e altamente sugestivo.

O Kato-Katz, por outro lado, é um método quantitativo baseado na clarificação da amostra por glicerina e corante verde de malaquita, destinado especialmente à quantificação de ovos de helmintos como Ascaris, Trichuris e ancilostomídeos. Por não conservar ou revelar larvas, esse método não é útil no diagnóstico de estrongiloidíase — o que justifica sua negatividade neste caso, mesmo diante de um paciente com carga parasitária suficiente para apresentar manifestações clínicas evidentes.

O esfregaço direto com azul de metileno, utilizado como técnica de triagem, tem baixa sensibilidade quando a carga parasitária é pequena ou quando as estruturas eliminadas são escassas ou frágeis, como ocorre na estrongiloidíase. Assim, sua negatividade não afasta a infecção, especialmente em fases iniciais ou crônicas.

A combinação entre clínica, presença de larvas móveis no Baermann e ausência de ovos no Kato-Katz conduz, de forma clara, à hipótese de infecção por Strongyloides stercoralis.

Alternativa A: INCORRETA. Ascaris lumbricoides elimina ovos nas fezes, que são bem detectados por Kato-Katz, mesmo em infecções leves. O método de Baermann não detecta ovos de Ascaris, e esses não se transformam em larvas viáveis nas fezes in natura, tornando essa justificativa incompatível com os achados apresentados.

Alternativa B: INCORRETA. Ancylostoma duodenale elimina ovos, e não larvas, nas fezes. A presença de larvas nas amostras pode ocorrer em fezes deixadas por muito tempo em temperatura ambiente, mas não é sua forma diagnóstica principal. Além disso, o Kato-Katz é eficaz na detecção de ovos de ancilostomídeos, principalmente em infecções moderadas a altas, tornando injustificada sua negatividade nessa hipótese.

Alternativa C: CORRETA. Strongyloides stercoralis é o único helminto intestinal comum no Brasil cuja forma eliminada nas fezes é a larva rabditoide, e não o ovo. Por isso, o Kato-Katz frequentemente se mostra negativo mesmo em casos sintomáticos. O método de Baermann-Moraes é o padrão ouro para detecção dessas larvas em fezes frescas, e a visualização de larvas móveis com esôfago rabditoide é característica da estrongiloidíase. O quadro clínico de tosse, eosinofilia, dor abdominal e negatividade sorológica para outros helmintos sistêmicos também sustenta esse diagnóstico.

Alternativa D: INCORRETA. Trichuris trichiura elimina ovos com tampões polares, que são pesados e podem ser visualizados por Kato-Katz, embora a sedimentação espontânea seja mais sensível em cargas baixas. Entretanto, esse parasita não apresenta larvas nas fezes, e sim ovos. Assim, a presença de larvas rabditoides invalida essa alternativa.

Alternativa E: INCORRETA. Enterobius vermicularis não elimina ovos nas fezes, mas sim na região perianal, e seu diagnóstico se dá preferencialmente pela técnica de Graham (fita adesiva). Ademais, esse nematoide não elimina larvas nas fezes, portanto a presença de larvas rabditoides no Baermann afasta a hipótese de oxiuríase.

Alternativa correta: C

Referências:

• Neves, D. P. Parasitologia Humana. 13ª ed. São Paulo: Atheneu, 2022.
  
  
• Garcia, L. S. Diagnostic Medical Parasitology. 6th ed. ASM Press, 2016.
  
  
• Ministério da Saúde. Manual de Diagnóstico Laboratorial das Parasitoses Intestinais. Brasília: MS, 2004.
  
  
• World Health Organization (WHO). Basic Laboratory Methods in Medical Parasitology. Geneva: WHO, 1991.