Dica do autor: O controle de doenças vetoriais, como dengue, zika, chikungunya, malária e febre amarela, depende de forma crítica do uso racional e estratégico de inseticidas. No entanto, o uso contínuo ou indiscriminado desses produtos pode levar ao surgimento de populações resistentes, colocando em risco a eficácia das campanhas de controle. Para monitorar essa ameaça, a OMS propôs o teste de suscetibilidade padronizado, também conhecido como teste de bioensaio com papéis impregnados.

Nesse procedimento, mosquitos adultos (geralmente fêmeas não alimentadas e com idade conhecida) são expostos por 60 minutos a papéis filtro impregnados com concentrações específicas de inseticidas (como deltametrina, permetrina ou malationa). Os insetos são então transferidos para tubos de recuperação com papel não impregnado, onde permanecem por 24 horas, com acesso a solução açucarada. Após esse período, contabiliza-se a mortalidade total, sendo:

• ≥ 98%: população suscetível
  
  
• Entre 90–97%: resistência possível (requer investigação adicional)
  
  
• < 90%: resistência confirmada

Esse teste é uma ferramenta epidemiológica e operacional essencial, pois permite identificar áreas com falhas no controle químico, orientar a substituição do inseticida utilizado e embasar políticas públicas de rotação de princípios ativos (manejo integrado da resistência).

Do ponto de vista fisiopatológico, a resistência dos vetores pode ocorrer por diversos mecanismos, como:

• Mutações no canal de sódio dependente de voltagem (resistência kdr, do inglês knockdown resistance), que reduzem a eficácia dos piretroides e DDT.
  
  
• Aumento na atividade de enzimas detoxificantes, como monooxigenases (citocromo P450), esterase e glutationa S-transferase.
  
  
• Alterações comportamentais, como evitar superfícies tratadas ou mudar o horário de alimentação.

Esse fenômeno não é apenas uma preocupação laboratorial, mas sim um problema de saúde pública, pois compromete diretamente a capacidade de resposta das equipes de vigilância ambiental frente a surtos epidêmicos.

Alternativa A: INCORRETA. A detecção de esporozoítos nas glândulas salivares é usada principalmente em vetores de malária (Anopheles spp.), por meio de dissecção entomológica ou técnicas moleculares. Não se relaciona com o teste de resistência a inseticidas.

Alternativa B: INCORRETA. A avaliação da oviposição não é feita em bioensaios de resistência, e sim em estudos de comportamento reprodutivo. O teste da OMS não mede fertilidade nem postura de ovos.

Alternativa C: CORRETA. O teste avalia resistência populacional, identificando se os insetos capturados em campo ainda são sensíveis aos produtos aplicados nas ações de controle vetorial. É um instrumento de vigilância ativa que embasa decisões estratégicas.

Alternativa D: INCORRETA. A identificação da espécie do vetor é feita por morfologia, chaves taxonômicas ou métodos moleculares. Reações cruzadas com feromônio não têm aplicação prática nesse contexto.

Alternativa E: INCORRETA. O comportamento alimentar (antropofilia, zoofilia) é avaliado por métodos distintos, como armadilhas com atrativos ou análise do conteúdo abdominal, não sendo foco do teste de suscetibilidade.

Resposta: Alternativa C

Referências:

• SanarFlix. Exame de Vetores, 2024. Capítulo 4 – Captura de Insetos, seção 4.3: Teste de Resistência a Inseticidas.
  
  
• WHO. Test Procedures for Insecticide Resistance Monitoring in Malaria Vector Mosquitoes, 2nd ed., 2016.
  
  
• Ministério da Saúde. Nota Técnica sobre Monitoramento da Resistência do Aedes aegypti a Inseticidas, 2020.
  
  
• Neves, D. P. Parasitologia Humana, 13ª ed., Guanabara Koogan.
  
  
• Service, M. W. Medical Entomology for Students, 5th ed., Cambridge University Press.