Dica do autor: Em crianças vivendo em ambientes com condições sanitárias precárias, como abrigos urbanos ou instituições de acolhimento, é comum a ocorrência de coinfecções parasitárias, refletindo a diversidade de formas evolutivas, vias de transmissão e manifestações clínicas. O Exame Parasitológico de Fezes (EPF) precisa ser estrategicamente adaptado à faixa etária, sintomatologia e suspeitas clínicas, incorporando múltiplos métodos complementares para ampliar a sensibilidade e especificidade diagnóstica.

O método de Graham (fita adesiva) é o padrão-ouro para a detecção de ovos de Enterobius vermicularis, cuja fêmea realiza a oviposição na região perianal durante a noite. Seus ovos são pequenos, com parede espessa e dupla membrana, e não costumam ser eliminados diretamente nas fezes, o que torna o EPF convencional de baixa sensibilidade nesse caso.

A presença de cistos binucleados e trofozoítos móveis em exame direto com salina e lugol sugere fortemente a presença de protozoários com transmissão fecal-oral, como Giardia duodenalis e Entamoeba coli. A mobilidade típica dos trofozoítos giardíacos é observada preferencialmente em fezes frescas, enquanto os cistos (formas de resistência) podem ser concentrados por métodos como o de Ritchie (formol-éter), especialmente em amostras mais formadas.

A negatividade da coloração de Ziehl-Neelsen modificada praticamente exclui a presença de protozoários coccídios ácido-álcool resistentes, como Cryptosporidium spp., Cyclospora cayetanensis e Cystoisospora belli, o que reforça a adequação do raciocínio em direção a parasitas mais comuns e não coccídios.

O conjunto de técnicas empregado — fita adesiva, concentração por Ritchie, coloração de Ziehl-Neelsen e exame direto — representa uma abordagem completa e direcionada a múltiplos grupos parasitários, com base nas características estruturais, no tipo de eliminação e na fase do ciclo de vida predominante nas fezes.

Alternativa A: INCORRETA. A alternativa apresenta erros conceituais importantes. Isospora belli é um coccídio cujos oocistos não são detectados pela fita adesiva, mas sim por coloração como Ziehl-Neelsen — que, neste caso, foi negativa. Além disso, Enterobius não possui trofozoítos móveis — trata-se de um nematoide intestinal, cujas larvas não são eliminadas nas fezes em condições normais. A descrição morfológica dos cistos também não corresponde a Isospora.

Alternativa B: INCORRETA. Embora Giardia e E. histolytica possam estar associadas a trofozoítos móveis e cistos binucleados, a fita adesiva não detecta ovos de Ascaris lumbricoides. Esse parasita é geralmente identificado por técnicas de concentração ou diretamente em fezes moldadas. Além disso, os ovos de Ascaris têm membrana espessa rugosa, o que não se encaixa na descrição de “dupla membrana fina” observada.

Alternativa C: CORRETA. A tríade apresentada nesta alternativa é plenamente compatível com os achados clínico-laboratoriais. Os ovos com dupla membrana na fita adesiva são característicos de Enterobius vermicularis, cuja identificação se dá exclusivamente por esse método. Os trofozoítos móveis e cistos binucleados observados no exame direto e por Ritchie são compatíveis, respectivamente, com Giardia duodenalis (forma móvel) e Entamoeba coli (cistos multinucleados inofensivos). O quadro clínico de esteatorreia e prurido anal corrobora fortemente a presença de Giardia e Enterobius, respectivamente, sendo ambos extremamente prevalentes em contextos de higiene precária e alta exposição fecal-oral.

Alternativa D: INCORRETA. Strongyloides stercoralis não é identificado por fita adesiva, mas por técnicas que detectam larvas móveis em fezes frescas ou por cultura, como Baermann ou Agar nutritivo. Além disso, Blastocystis hominis não é corado por Ziehl-Neelsen, e a alternativa menciona essa técnica como indicativa. A menção a trofozoítos móveis de Giardia está correta, mas as demais associações inviabilizam a resposta.

Alternativa E: INCORRETA. A coloração de Ziehl-Neelsen é de fato utilizada para Cyclospora cayetanensis, mas foi negativa no caso clínico, o que exclui esse parasita da consideração diagnóstica. Giardia duodenalis não elimina ovos, e sim cistos ou trofozoítos, que não são detectados pela fita adesiva, e Enterobius vermicularis não apresenta trofozoítos móveis, sendo um verme nematoide e não um protozoário.

Alternativa correta: C

Referências:

• Neves, D. P. Parasitologia Humana. 13ª ed. São Paulo: Atheneu, 2022.
  
  
• Garcia, L. S. Diagnostic Medical Parasitology. 6th ed. ASM Press, 2016.
  
  
• Ministério da Saúde. Manual de Diagnóstico Laboratorial das Parasitoses Intestinais. Brasília: MS, 2004.
  
  
• World Health Organization (WHO). Bench Aids for the Diagnosis of Intestinal Parasites. Geneva: WHO, 1994.